Резюме
Павлюченко К.П., Могилевский С.Ю., Гудзенко Е.А. Влияние биофлавоноида рутозид на энзиматическую антиоксидантную систему хрусталика и внутриглазной жидкости у животных с экспериментальным диабетом.
Изучено влияние биофлавоноида рутозид на энзиматическую антиоксидантную систему хрусталика и в внутриглазной жидкости животных на модели стрептозотоцинового диабета. Установлено, что в хрусталике и внутриглазной жидкости у животных с экспериментальным диабетом достоверно снижена активность супероксиддисмутазы, глутатионпероксидазы и каталазы. Включение в рацион рутозида позволило повысить их активность в хрусталике в внутриглазной жидкости на 28,6% и 19,4%, глутатионпероксидазы – на 19,5% и 24,7% и каталазы – на 16,4% и 20,0% соответственно.
Ключевые слова: экспериментальный диабет, хрусталик, внутриглазная жидкость, энзиматическая антиоксидантная система, рутозид.

Резюме
Павлюченко К.П., Могілевський С.Ю., Гудзенко К.А. Вплив біофлавоноїду рутозид на ензиматичну антиоксидантну систему кришталика та внутрішньоочної рідини у тварин з експериментальним діабетом.
Вивчений вплив біофлавоноїду рутозид на ензиматичну антиоксидантну систему кришталика та внутрішньоочної рідині тварин на моделі стрептозотоцинового діабету. Встановлено, що в кришталику і внутрішньоочній рідині у тварин з експериментальним діабетом достовірно понижена активність супероксиддисмутази, глутатіонпероксидази та каталази. Включення в раціон рутозиду дозволило підвищити їх активність в кришталику у внутрішньоочній рідині на 28,6% і 19,4%, глутатіонпероксидази – на 19,5% і 24,7% і каталази – на 16,4% і 20,0% відповідно.
Ключові слова: експериментальний діабет, кришталик, внутришньоочна рідина, ензиматична антиоксидантна система, рутозид.

Summary
Pavlyuchenko К., Mogilevskyy S., Gudzenko K. Influence of the bioflavonoid rutoside on the enzymatic antioxidant system of the eye lens and intraocular fluid of animals with an experimental diabetes.
Influence of the bioflavonoid rutoside is studied on the enzymatic antioxidant system of the eye lens and intraocular fluid of animals with an experimental streptozotocin diabetes. It is set that in the eye lens and intraocular fluid for animals with experimental diabetes activity of superoxide dismutase, glutathione peroxidase and catalase were authentic reduce. Plugging in the ration of rutoside allowed to promote their activity in the eye lens and in an intraocular fluid the superoxide dismutase on 28,6% and 19,4%, glutathione peroxidase – on 19,5% and 24,7%, catalase – on 16,4% 20,0%.
Key words: experimental diabetes, lens, intraocular fluid, enzymatic antioxidant system, rutoside.

Рецензент: д.мед.н., проф. А.М. Петруня

УДК 617.741+615.3:591.484+591.147.7.083

Донецкий национальный медицинский университет им. М.Горького

83003, Украина, г. Донецк, пр. Ильича 16

Donetsk National Medical University n. a. M. Gorky

Illicha Av. 16, Donetsk, 83003, Ukraine

oko_66@mail.ru

Литература

1. Бабижаев М.А. Накопление продуктов перекисного окисления липидов в хрусталике при катаракте / М.А. Бабижаев, А.А. Шведова, Ю.В. Архипенко // Бюллетень экспериментальной биологии. – 1985. – № 9. – С. 299-301.
2. Веселовская З.Ф. Катаракта / З.Ф. Веселовская, Н.Ф. Боброва, В.В. Вит. – Киев: Книга плюс, 2002. – 208 с.
3. Воскресенская Л.К. Патогенез и лечение старческой и диабетической катаракты: автореф. дисс. … докт. мед. наук: спец.14.00.16, 14.00.08 / Л.К. Воскресенская. – М.: Российский Университет дружбы народов, 1993. – 32 с.
4. Наследов А. SPSS компьютерный анализ данных в психологии и социальных науках / А. Наследов. – Спб.: Питер, 2005. – 416 с.
5. Новые методы биохимического анализа. – Л.: изд-во Ленинградского университета, 1991. – 395 с.
6. Bergmeyer H.U. Methoden der enzymatischen Analyse / H.U. Bergmeyer // Herausgegeben von H.U. Bergmeyer. – Berlin, 1986. – P. 2198-2203.
7. Casado A. Antioxidant enzyme levels in red blood cells from cataract patients / A. Casado, R. Torre, E. Lopez-Fernandez // Gerontology. – 2001. – Vol. 47. – P. 186-188.
8. Chung S.S.M. Contribution of polyol pathway to diabetes-induced oxidative stress / S.S.M. Chung, E.C.M. Ho, K.S.L. Lam // J. Am. Soc. Nephrol. – 2003. – Vol. 14. – P. S.233-S236.
9. Devamanoharan P.S. Oxidative stress to rat lens in vitro / P.S. Devamanoharan, S.D. Varma // Free Rad. Res. – 1998. – Vol. 29. – P. 189-195.
10. Eman M.A. The role of alpha-lipoic acid in streptozotocin-induced diabetic cataract / M.A. Eman, S.M. Eman // Romanian J. Biophys. – 2011. – Vol. 21. – P. 73-83.
11. Goswami S. Spectrum and range of oxidative stress responses of human lens epithelial cells to H2O2 insult / S. Goswami, N.L. Gheets, J. Zavadil // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. – 2003. – Vol. 44, № 5. – P. 2084-2093.
12. Donma O. Blood and lens lipid peroxidation and antioxidant status in normal individuals, senile and diabetic cataractous patients / O. Donma, E. Yorulmaz, H. Pekel // Curr. Eye Res. – 2002. – Vol. 25. – P. 9-16.
13. Evelson P. Hepatic morphological changes and oxidative stress in chronic streptozotocin-diabetic rats / P. Evelson, C. Susemihl, I. Villarreal // Ann. Hepatol. – 2005. – Vol. 4. – P. 115-120.
14. Gottipati S. Mitochondrial superoxide dismutase activation with 17 β-estradiol-treated human lens epithelial cells / S. Gottipati, P.R. Cammarata // Mol. Vis. – 2008. – Vol. 14. – P. 898-905.
 15.  Hazhim Z. Antioxidant markers in human senile and diabetic cataractous lenses / Z. Hazhim, S. Zarina // J. Coll. Physicians Surg. Pak. – 2006. – Vol. 16, № 10. – P. 637-640.
16. Kyselova Z. Pharmacological prevention of diabetic cataract / Z. Kyselova, M. Stefec, V. Bauer // J. Diabet. Complicat. – 2004. – Vol. 18. – P. 129-140.
17. Lin D. Expression of superoxide dismutase in whole lens prevents cataract formation / D. Lin, M. Barnett, L. Grauer // Mol. Vis. – 2005. – Vol. 11. – P. 853-858.
18. Obrosova I.G. Diabetic cataracts: mechanisms and management / I.G. Obro-sova, S.S.M. Chung, P.F. Kador // Diabetes. Metab. Res. Rev. – 2010. – Vol. 26. – P. 172-180.
19. Olofsson E.M. Enhanced diabetic cataract in mice lacking Cu-Zn superoxide dismutase / E.M. Olofsson, S.L. Marklund, A. Behndig // Acta Ophthalmol. Scand. – 2007. – Vol. 85. – P. 240-245.
20. Qujeq D. Catalase (antioxidant enzyme) activity in streptozotocin-induced diabetic rats / D. Qujeq, T. Rezvani // Int. J. Diabetes Metabol. – 2007. – Vol. 15. – P. 22-24.
21. Raju T.N. Cumulative antioxidant defense against oxidative challenge in galactose-induced cataractogenesis in Wistar rats / T.N. Raju, C.S. Kumar [et al.] // Indian J. Exp. Biol. – 2006. – Vol. 44, №9. – P. 733-739.
22. Spector A. Oxidative stress-induced cataract: mechanism of action / A. Spector // FASEB J. – 1995. – Vol. 9. – P. 1173-1182.
23. Tarwadi K. Linkages of antioxidant, micronutrient, and socioeconomic status with the degree of oxidative stress and lens opacity in indian cataract patients / K. Tarwadi, V. Agte // Nutrition. – 2004. – Vol. 20 (3). – P. 261-267.
24. Varma S.D. Oxidative stress in lens in vivo: inhibitory effect of caffeine. A preliminary report / S.D. Varma, K.R. Hedge, S. Kovtun // Mol. Vis. – 2010. – Vol. 16. – P. 501-505.
25. Vinson J.A. Oxidative stress in cataracts / J.A. Vinson // Pathophysiology. – 2006. – Vol. 13 (3). – P. 151-162.
26. Wu C-H. Inhibitory effect of naturally occurring flavonoids on the formation of advanced glycation endproducts / C-H. Wu, G-H. Yen // J. Agric. Food Chem. – 2005. – Vol. 53. – P. 3167-3173.